VivoSight bietet einzigartige Bildgebung und Messungen mit Mikronadeln (MN) zur Optimierung von:
- Leistung der MN-basierten Arzneimittelabgabe
- MN-Insertions- und Retentionskonsistenz
- Langzeitsicherheit wiederholter MN-Anwendungen
- Entwicklung von Standards für MN-Design, Fertigung und Qualitätskontrolle
Zu den VivoSight Dx-Funktionen zur Förderung Ihrer MN-Entwicklung gehören:
- Zu den VivoSight Dx-Funktionen zur Förderung Ihrer MN-Entwicklung gehören: In-vivo-Bildgebung von Mikronadeln in Echtzeit
- Messen Sie Mikronadelabmessungen, Eindringtiefe, Auflösung und Quellung
- Messen Sie die Entzündungsreaktion über vaskuläre Veränderungen
- Verstehen Sie die Morphologie der durch das Gerät verursachten Hautdefekte
- Messen Sie die Kinetik des Porenverschlusses und der Hauterholung
- Überprüfen Sie die Reproduzierbarkeit und Konsistenz der Ergebnisse
“VivoSight OCT ist für unsere Mikronadelforschung und für die Entwicklung verwandter Geräte und Anwendungen unerlässlich. Die Möglichkeit, polymere Mikronadeln in vivo sichtbar zu machen, ermöglicht die Messung der exakten Eindringtiefe. Darüber hinaus ermöglicht uns die OCT, die Quell- und Auflösungskinetik von biologisch abbaubaren Nadeln zu überwachen. Es ist ein unverzichtbares Werkzeug, um die Forschung und Produktentwicklung von Microneedle Array Patch (MAP) voranzutreiben und zu optimieren.” [1, 3]
– Ryan F. Donnelly, PhD, School of Pharmacy, Queen’s University Belfast, Vereinigtes Königreich
In-vivo-Strukturanalyse von Microneedle Array Patches (MAPs)
Die VivoSight-Pixelauflösung von 4,4 μm kann die Details der meisten Mikronadel-Arrays erkennen
Polymer-MAPs reflektieren Licht anders als Haut, wodurch sie in vivo identifiziert werden können
MAP-Maßnahmen über OCT:
- Nadelabmessungen
- Eindringtiefe der Nadel
- Porendurchmesser
- Luftspalt
- Substratdicke
- Lösungs- und Quellverhalten
Relevanz von MAP-Messungen [3]
Nadelauflösungs- und Quellraten
- Optimierung der Arzneimittelabgabe
- Optimierung der Flüssigkeitsabsorption und Probenahme
- Substrat- oder Reservoirbeteiligung
Arzneimittelabgabe:
Anschwellen von Mikronadeln und hoch dosierte Arzneimittel- und Impfstoffabgabe durch eine separate arzneimittelhaltige Schicht
Eindringtiefe der Nadel:
- Dermale Penetrationsoptimierung, relevant für die spezifische Anwendung
Flüssigkeitsprobenahme:
Optimierte Mikronadeln für die Extraktion von interstitieller Hautflüssigkeit. Gelegenheit zur Probenahme von Biomarkern und Medikamenten für die Diagnostik, Patientenüberwachung und tragbare Sensoren
Nadelarray-Geometrie
- Überprüfen Sie das konsistente Verhalten beim Einfügen und Aufbewahren von Patches
Energieabgabe:
Beladen von Hydrogel-bildenden Microneedle Array Patches (MAPs) mit Laser-Target-Chromophoren (plasmonische Gold-Nanostäbchen) für die kontrollierte photothermische Lasertherapie von hellem Hautkrebs
Porengröße:
- Optimierung der Hautwiederherstellung
VivoSight 6 mm x 6 mm Sichtfeld umfasst einen großen Teil eines Arrays
• Nadelpenetration der Haut
• Größe des Luftspalts
• Haut/Substrat-Grenzfläche
Mit VivoSight können Sie die Nadellänge und Einstichtiefe im Laufe der Zeit überwachen und messen
- Blau (a + b): Gesamtnadellänge. Reduziert sich über 20 Minuten, wenn die Nadel ihre Form zu einem stumpfen Kegel ändert
- Orange (b): Nadelpenetration in die Haut. Etwa 75 % der Nadel durchdrangen die Haut.
- Der Luftspalt zwischen Haut und Substrat ist der Unterschied zwischen den beiden; es reduziert sich über 20 Minuten
Mit VivoSight können Sie die Porengröße, Schwellung und Auflösung im Laufe der Zeit überwachen und messen
Verweise:
1. R.F. Donnelly et al. Optical coherence tomography is a valuable tool in the study of the effects of microneedle geometry on skin penetration characteristics and in-skin dissolution. Journal of Controlled Release 147 (2010) 333–341
2. S. Sharma, et al., Rapid, low cost prototyping of transdermal devices for personal healthcare monitoring, Sensing and Bio-Sensing Research (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.sbsr.2016.10.004
3. R.F. Donnelly et al. Evaluation of the clinical impact of repeat application of hydrogel-forming microneedle array patches. Drug Delivery and Translational Research (Feb 2020). https://doi.org/10.1007/s13346-020-00727-2
4. E. Kim et al., Microneedle array delivered recombinant coronavirus vaccines: Immunogenicity and rapid translational development, EBioMedicine (2020), https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2020.102743
5. M. R. Prausnitz, Engineering Microneedle patches for vaccination and drug delivery to skin. Annu. Rev. Chem. Biomol. 8, 177–200 (2017).
6. J. W. Lee, J. H. Park, M. R. Prausnitz, Dissolving microneedles for transdermal drug delivery. Biomaterials 29, 2113–2124 (2008).
7. Banzhaf CA, Wind BS, Mogensen M, Meesters AA, Paasch U, Wolkerstorfer A, Haedersdal M. Spatiotemporal Closure of Fractional Laser-Ablated Channels Imaged by Optical Coherence Tomography and Reflectance Confocal Microscopy, Lasers Surg Med. 2016 Feb;48(2):157-65
